بررسی اهمیت تشخیصی پاتوژن فرصت طلب مورگانلا مورگانی با استفاده ویژگی‌های بیوشیمیایی، ژنوتیپی و مقاومت آنتی بیوتیکی
محورهای موضوعی : ترکیبات ضد میکروبیعرفان شهبازی 1 , حمیدرضا ملاصالحی 2 , داریوش مینایی طهرانی 3
1 - دانشکده علوم و فناوری زیستی دانشگاه شهید بهشتی، تهران، ایران
2 - 2. مرکز تحقیقات پروتئین، دانشگاه شهید بهشتی، تهران، ایران.
3 - 1. دانشکده علوم و فناوری زیستی دانشگاه شهید بهشتی، تهران، ایران
کلید واژه: مورگانلا مورگانی, پاتوژن فرصت طلب, بیماری زایی, مقاومت آنتی بیوتیکی,
چکیده مقاله :
سابقه و هدف: مورگانلا مورگانی (Morganella morganii)، به عنوان یک پاتوژن فرصت طلب نامعمول باعث ایجاد عفونت های سیستمیک و مجاری ادراری بعد از اعمال جراحی می شود. با این وجود، نمونه های کلینیکی جدا شده از مورگانلا مورگانی، در برابر آنتی بیوتیک های متعدد مقاومت نشان می دهد که این خاصیت حاصل وجود ژن های مختلف مقاومتی در این باکتری است، که این موضوع کنترل این باکتری را با چالش جدی مواجه کرده است. به علاوه تکاملِ بیماری زایی، مورگانلا را به یک پاتوژن مهم تبدیل کرده است. نتایج: اطلاعات جمع آوری شده نشان می دهد که مورگانلا مورگانی می تواند بیماری های مختلفی از قبیل سپسیس، مننژیت، عفونت های استخوانی، باکتریمی، سلولیت و آبسه ایجاد کند. این باکتری معمولا در بیمارانی که عفونت های مختلفی دارند منجر به درصد بالایی از مرگ و میر می شود. با این حال جنس مورگانلا تا کنون مورد توجه زیادی قرار نگرفته و در کشور ما تا حدودی نادیده گرفته شده است. بحث: این مطالعه به بررسی خصوصیات فنوتیپی، ژنوتیپی و نقش آنها در بیماری زایی این باکتری می پردازد تا خطرات احتمالی بالقوه آن مورد توجه قرار گیرد. این اطلاعات می تواند برای شناسایی موثر و سریع جهت انتخاب و تجویز داروها جهت کنترل پیشگیری و روش های درمانی مناسب مورد استفاده قرار گیرد.
Aim and background: The gram negative facultative anaerobic bacilli Morganella morganii is mostly found in the environment and also human, reptile and mammals’ intestinal tracts as a part of normal flora. M. morganii is mostly considered as an opportunistic pathogen which mostly causes nosocomial infections. Regarding the capability of this bacterium in carrying different drug resistance genes in its genome, M. morganii is challenging the clinical infection control. Furthermore M. morganii is considered as an important pathogen due to the virulence evolution. Peritonitis, pneumonia, empyema, arthropathy, pericarditis, endophethalmitis, meningitis, wound infection and bacteremia are the infections which can occur because of M. morganii. Results: Accumulated data has shown that M. morganii often causes a high percentage of mortality in patients who suffer from some infections. However, this bacterium has been neglected in the word and especially in our country. Discussion: This study aims to review the phenotypic and genotypic features of M. morganii and the role of these attributes in the pathogenicity of this bacterium. This information can be used to find a rapid and efficient way to detect and opt for the best way of prevention and treatment of M. morganii.
1. Liu H, et al. Morganella morganii, a non-negligent opportunistic pathogen. International Journal of Infectious Diseases. 2016. 50:10-17.
2. Cuff A. Spontaneous aneurysm of the dorsalis pedis artery. British medical journal. 1907. 2(24 27):1-6.
3. Fulton M. The identity of Bacterium columbensis Castellani. Journal of bacteriology. 1943. 46(1):79.
3. Chen YT, et al. Whole-genome sequencing and identification of Morganella morganii KT pathogenicity-related genes. BMC genomics. 2012. 13(7):1
5. Farmer JJr. Enterobacteriaceae: introduction and identification. Manual of clinical microbiology. 1995. 438-449.
6. Singla N, et al. Morganella morganii could be an important Intensive Care Unit pathogen. Indian Journal of Critical Care Medicine. 2010. 14(3):154.
7. Farmer J. Other genera of the family Enterobacteriaceae: Genus. Rahnella Izard, Gavini, Trinel and Leclerc 1981, 382VP. Bergey’s Manual of Systematic Bacteriology. 1984. 1:513.
8. Siboni K. Correlation of the characters fermentation of trehalose, non-transmissible Resistence to tetracycline, and relatively long flagellar wavelength in Proteus morgani. Acta Pathologica Microbiologica Scandinavica Section B Microbiology. 1976. 84(6):421-427.
9. Hickman F, et al. Unusual groups of Morganella (" Proteus") morganii isolated from clinical specimens: lysine-positive and ornithine-negative biogroups. Journal of clinical microbiology. 1980. 12(1):88-94.
10. Stock I, and Wiedemann B, Identification and natural antibiotic susceptibility of Morganella morganii. Diagnostic microbiology and infectious disease. 1998. 30(3):153-165.
11. Parikh RY, et al. Genus-wide physicochemical evidence of extracellular crystalline silver nanoparti cles biosynthesis by Morganella spp. PLoS One. 2011. 6(6):e21401.
12. Fernández L, and RE. Hancock. Adaptive and mutational resistance: role of porins and efflux pumps in drug resistance. Clinical microbiology reviews. 2012. 25(4):661-681.
13. Yuan W, et al. Cell wall thickening is associated with adaptive resistance to amikacin in methicillin-resistant Staphylococcus aureus clinical isolates. Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 2013:522.
14. Fernández L, Breidenstein EB, and Hancock RE. Creeping baselines and adaptive resistance to antibiotics. Drug Resistance Updates. 2011. 14(1):1-21.
15. Motta SS, Cluzel P, and Aldana M. Adaptive resistance in bacteria requires epigenetic inheritance, genetic noise, and cost of efflux pumps. PloS one, 2015.10(3):e0118464.
16. Parikh RY, et al. Extracellular synthesis of crystalline silver nanoparticles and molecular evidence of silver resistance from Morganella sp.: towards understanding biochemical synthesis mecha nism. ChemBioChem. 2008. 9(9):1415-1422.
17. Shi DS, et al. Identification of bla KPC-2 on different plasmids of three Morganella morganii isolates. European journal of clinical microbiology & infectious diseases. 2012. 31(5):797-803.
18. Olaitan AO, et al. Genome analysis of NDM-1 producing Morganella morganii clinical isolate. Expert review of anti-infective therapy. 2014. 12(10): 1297-1305.
19. Vanyushin B. A view of an elemental naturalist at the DNA world (base composition, sequences, methylation). Biochemistry (Moscow). 2007. 72(12): 1289-1298.
20. Poirel L, et al. Cloning, sequence analyses, expression, and distribution of ampC-ampR from Morganella morganii clinical isolates. Antimicrobial agents and chemotherapy. 1999. 43(4):769-776.
21. Fraser GM, et al. Swarming-coupled expression of the Proteus mirabilis hpmBA haemolysin operona. Microbiology. 2002. 148(7): 2191-2201.
22. Juhas M, et al. Novel type IV secretion system involved in propagation of genomic islands. Journal of bacteriology. 2007. 189(3):761-771.
23. Diekema D, et al. Trends in antimicrobial susceptibility of bacterial pathogens isolated from patients with bloodstream infections in the USA, Canada and Latin America. International journal of antimicrobial agents, 2000. 13(4):257-271.
24. Osanai S, et al. Renal abscess with Morganella morganii complicating leukemoid reaction. Internal Medicine. 2008. 47(1):51-55.
25. Caniklioglu M, et al. Clinical and radiological outcome of the growing rod technique in the management of scoliosis in young children. Acta Orthop Traumatol Turc, 2012. 46(5):379-84.
26. Samonis G, et al. Fatal septicemia and meningitis due to Morganella morganii in a patient with Hodgkin's disease. Scandinavian journal of infectious diseases, 2001. 33(7):553-555.
27. Kim JH, et al. Morganella morganii sepsis with massive hemolysis. Journal of Korean medical science. 2007. 22(6):1082-1084.
28. Demiray T, et al. A severe Morganella morganii endophthalmitis; followed by bacteremia. Iranian journal of microbiology. 2016. 8(1):70.
29. Klausen NK, and Huss HH. Growth and histamine production by Morganella morganii under various temperature conditions. International Journal of Food Microbiology.1987. 5(2):147-156.
30. Kim S, et al, Molecular detection of a histamine former, Morganella morganii, in albacore, mackerel, sardine, and a processing plant. Journal of food science-chicago. 2003. 68(2):453-457.
